ROTOR+最初是為芽殖酵母(釀酒酵母)遺傳學而設計。對萊茵衣藻(Chlamydomonas reinhardtii)進行大規(guī)模的遺傳篩選，ROTOR+的功能可以發(fā)揮很大的作用。然而，衣藻與出芽酵母菌在細胞大小、生長速度、菌落形態(tài)和粘附性以及光響應性方面存在差異。因此，ROTOR+能否適用于衣藻類研究成為了關鍵。

因此在測試過程中要解決的下面的問題顯得尤為重要：

Q1：細胞是否通過ROTOR+可靠地從液體或固體介質中挑取到RePads復制針板上，在針頭之間、針板之間、不同平板間，細胞的數(shù)量/密度是否可以再生?

A1：可重復性挑取和接種的細胞數(shù)量，取決于細胞的表面特性：有多粘稠，粘附(或被排斥)在瓊脂表面的程度等等。衣藻在這些特性上不同于酵母。例如，在使用絲絨(酵母的標準方法)進行復制時，衣藻菌落有很強的傾向，要么*粘在平板上，要么*轉移到絲絨上。

Q2：細胞在此過程中是否保持高活力?

A2：轉移的細胞保持高活力顯然是必要的。從我們最初的工作中可以清楚地看出，在許多方面，衣藻在某些操作過程中比酵母菌或大腸桿菌更容易受到損傷。例如，當從瓊脂上挑取到玻璃或不銹鋼針上時，衣藻在空氣中大約40秒后就會幾乎*喪失生存能力。

Q3：針頭之間、源板之間或靶板之間是否有明顯的交叉污染?

A3：根據(jù)生物體的特性，可以很容易地想象，活細胞氣溶膠可以通過ROTOR+復制操作傳播，導致交叉污染和破壞實驗。

Q4：使用ROTOR+可以可靠接種和區(qū)分的菌落最大密度是多少?

A4：菌落可以被接種的最大密度取決于生物體的大小和生長速度，并將影響對生物體進行篩選的通量。

首先通過ROTOR+對液體到瓊脂的轉移展開相關實驗。

用Singer PlusPlates方板，注入50ml的TAP瓊脂(標準衣藻培養(yǎng)基)，并添加了50μg/ml氨芐西林來抑制細菌污染。由于衣藻在液體介質中具有很強的流動性，對光線也有很強的敏感性，因此需要將ROTOR+上的內(nèi)部光源取下，并在操作過程中盡可能遮擋光線。如果沒有這種預防措施，藻類會在源板的不同區(qū)域強烈聚集，會嚴重影響整個板的菌落再現(xiàn)性。

用一個注入25ml TAP的液體培養(yǎng)基平板，其中含有約10^6cells/ml濕的衣藻(cc-124背景)，用384RePad長針，從液體到瓊脂，從384密度排列成1536密度，(針重復利用)。在33°C強光照下培養(yǎng)3天(圖1A)，每隔一段時間顯微鏡觀察。

圖1：液體到瓊脂轉移

可以看到菌落具有明顯的活力，基本上每個細胞被接種18小時都形成了一個微菌落(圖1C)。平板的圖像顯示了接種區(qū)域的再生性，不同平板之間也觀察到良好的再生性。

另一方面，在這種固定密度下，菌落之間有明顯的空間分隔，中間沒有污染的菌落產(chǎn)生。

ROTOR+從挑取到接種需要5-10秒。為了測定在空氣中RePad上的衣藻活力，在挑取衣藻后和接種前分別暫停0、10、20和40秒，轉移的細胞數(shù)量及培養(yǎng)后的活力基本保持不變。從含有50ml細胞懸浮液的SINGER平板中，測試了液體到瓊脂的轉移，結果基本相同，表明了有效液滴大小與針插入的液體深度幾乎無關。

接下來通過ROTOR+從瓊脂到瓊脂的轉移展開實驗。

以含有TAP瓊脂的Singer PlusPlate方板為來源板，上有cc-124背景的衣藻菌膜。使用384RePad長針挑取細胞并轉移到新板上，連續(xù)點種16個點，過程中不回到來源板，這形成6144個點，每16個點逐漸稀釋接種物。用顯微鏡檢查這些培養(yǎng)皿，并培養(yǎng)成菌落。

從培養(yǎng)的菌落來看，菌落直徑約1毫米，連續(xù)接種導致轉移細胞的數(shù)量逐漸減少，該方法可用于將接種密度降低到孤立的單細胞。瓊脂-瓊脂接種的細胞存活率通常很高，幾乎相當于液體-瓊脂接種。

一般來說，單個細胞和由此產(chǎn)生的菌落和微菌落都停留在由針的幾何形狀決定的空間邊界內(nèi)，因為衣藻在平板上是不活動的，而且?guī)缀醪恍枰獓婌F或氣溶膠就可以精確地進行操作。因此，這些程序適用于在有限的空間和耗材里，最大限度培養(yǎng)和轉移衣藻。